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                                當(dāng)前位置 > 首頁 > 技術(shù)文章 > 蛋白-蛋白相互作用技術(shù)內(nèi)容

                                蛋白-蛋白相互作用技術(shù)內(nèi)容

                                瀏覽次數(shù):3392 發(fā)布日期:2017-8-7  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負

                                技術(shù)內(nèi)容

                                    蛋白質(zhì)并非孤立存在的生物分子,而是具有特定三維空間結(jié)構(gòu)并與其他蛋白質(zhì)相互作用,共同執(zhí)行功能。因此,蛋白質(zhì)的模塊及空間組織與其表達水平具有同樣的重要性。為了解析蛋白質(zhì)組的組織結(jié)構(gòu)單元而開發(fā)的基于質(zhì)譜的蛋白質(zhì)組學(xué)方法通常結(jié)合了質(zhì)譜檢測與各種生化試驗。其中最經(jīng)典的技術(shù)為1999[1]首次報導(dǎo)的親和純化-質(zhì)譜技術(shù)(affinity purification – mass spectrametry,AP-MS)。既可進行大規(guī)模的protein interactome 構(gòu)建[2],也能針對特定條件下特定蛋白質(zhì)的互作進行差異分析、時間動態(tài)分析等[3]

                                圖1:AP-MS技術(shù)的兩種運用。

                                技術(shù)原理
                                    使用親和標(biāo)簽 (AP-MS) 或特異性抗體 (CoIP-MS),在native條件下純化與目標(biāo)蛋白質(zhì)相互作用的蛋白,進而使用質(zhì)譜進行鑒定,通過test\control比對,過濾非特異結(jié)合蛋白,定性定量分析與特定蛋白質(zhì)直接或間接作用的蛋白質(zhì)。同時,結(jié)合 LFQ/TMT等定量技術(shù),可以方便的研究特定蛋白互作關(guān)系隨時間的變化情況。


                                圖2:AP-MS技術(shù)實驗原理。

                                樣品要求

                                Sample

                                Amount

                                Antibody

                                Tissue

                                200 mg

                                Yes

                                Cell

                                2×107

                                Yes

                                Cell (tag)

                                2×107

                                No

                                案例展示
                                    1、哈佛大學(xué)Steven P. Gygi教授實驗室運用高通量AP-MS技術(shù),進行了2594組AP-MS實驗,鑒定了23744個相互作用,包括了7668個蛋白質(zhì),為研究蛋白尤其是功能未知蛋白提供了重要參考意義[2] 。

                                圖3:高通量AP-MS技術(shù).


                                2、為了更好的了解生物學(xué)過程的內(nèi)在動態(tài)變化情況,蘇黎世聯(lián)邦理工學(xué)院的Ruedi Aebersold教授實驗室運用AP-MS技術(shù)研究了14-3-3b scaffold protein 的蛋白互作組在IGF1刺激下,insulin-PI3K-AKT信號通路隨時間的動態(tài)變化過程[3] 。

                                圖4:運用AP-MS研究14-3-3 scaffold protein 互作蛋白的時間動態(tài)關(guān)系,發(fā)現(xiàn)5種不同的cluster模式,對研究該信號通路的動態(tài)變化過程具有重大指導(dǎo)意義。

                                參考文獻
                                1. Rigaut, G.; Shevchenko, A.; Rutz, B.; Wilm, M.; Mann, M.; Seraphin, B., A generic protein purification method for protein complex characterization and proteome exploration. Nature biotechnology 1999, 17 (10), 1030-2.
                                2. Huttlin, E. L.; Ting, L.; Bruckner, R. J.; Gebreab, F.; Gygi, M. P.; Szpyt, J.; Tam, S.; Zarraga, G.; Colby, G.; Baltier, K.; Dong, R.; Guarani, V.; Vaites, L. P.; Ordureau, A.; Rad, R.; Erickson, B. K.; Wuhr, M.; Chick, J.; Zhai, B.; Kolippakkam, D.; Mintseris, J.; Obar, R. A.; Harris, T.; Artavanis-Tsakonas, S.; Sowa, M. E.; De Camilli, P.; Paulo, J. A.; Harper, J. W.; Gygi, S. P., The BioPlex Network: A Systematic Exploration of the Human Interactome. Cell 2015, 162 (2), 425-40.
                                3. Collins, B. C.; Gillet, L. C.; Rosenberger, G.; Rost, H. L.; Vichalkovski, A.; Gstaiger, M.; Aebersold, R., Quantifying protein interaction dynamics by SWATH mass spectrometry: application to the 14-3-3 system. Nat Meth 2013, 10 (12), 1246-1253.

                                 

                                 

                                來源:上?党缮锕こ逃邢薰
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