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                                國產(chǎn)蛋白純化儀做離子交換層析實(shí)驗(yàn)指南

                                瀏覽次數(shù):169 發(fā)布日期:2025-2-18  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
                                離子交換層析實(shí)驗(yàn)指南

                                離子交換層析(Ion Exchange Chromatography, IEX)是一種基于蛋白等電點(diǎn)(pI)和緩沖液 pH 之間的電荷差異,利用離子交換介質(zhì)對(duì)帶正電(陽離子交換)或負(fù)電(陰離子交換)的蛋白進(jìn)行分離的方法。該方法可用于蛋白純化、去除雜質(zhì)、濃縮目標(biāo)蛋白等。
                                 
                                1. 實(shí)驗(yàn)原理
                                離子交換層析依賴于蛋白的凈電荷與固定相的相互作用:
                                 
                                陽離子交換層析(Cation Exchange, CEX):固定相帶負(fù)電,結(jié)合帶正電的蛋白(pH < pI)。
                                常用填料:CM-Cellulose, SP-Sepharose。

                                陰離子交換層析(Anion Exchange, AEX):固定相帶正電,結(jié)合帶負(fù)電的蛋白(pH > pI)。
                                常用填料:DEAE-Cellulose, Q-Sepharose。

                                在不同鹽濃度(如 NaCl 梯度)或 pH 梯度的作用下,結(jié)合的蛋白被依次洗脫,實(shí)現(xiàn)分離。
                                 
                                2. 實(shí)驗(yàn)材料與設(shè)備
                                (1) 試劑與填料
                                1. 離子交換填料(如 Q Sepharose Fast Flow, SP Sepharose Fast Flow)。
                                2. 緩沖液(一般選擇 pKa 接近目標(biāo)蛋白 pI 的緩沖體系)。常用緩沖液:
                                • Tris-HCl(pH 7.0-8.5)
                                • HEPES(pH 6.8-8.2)
                                • MES(pH 5.5-6.7)
                                1. 洗脫鹽溶液:通常為 0-1 M NaCl 梯度洗脫,或 KCl、(NH₄)₂SO₄。
                                (2) 設(shè)備
                                層析柱(如 HiTrap Q FF 5 mL, HiTrap SP FF 5 mL)。
                                層析系統(tǒng)(Hass25 AKTA、FPLC等)。
                                (圖例使用輝因科技全具備自主知識(shí)產(chǎn)權(quán)國產(chǎn)蛋白純化系統(tǒng)Hy-Hass25)
                                輝因科技蛋白純化系統(tǒng)Hy-Hass25
                                紫外檢測儀(280 nm 監(jiān)測蛋白洗脫)。

                                3. 實(shí)驗(yàn)步驟

                                Step 1. 預(yù)處理
                                樣品準(zhǔn)備:
                                細(xì)胞裂解、離心(10,000 x g, 10 min),取上清。
                                0.22 μm 過濾,去除顆粒和雜質(zhì)。
                                調(diào)節(jié)緩沖液 pH 以確保目標(biāo)蛋白帶相應(yīng)電荷(pH < pI 選 CEX,pH > pI 選 AEX)。
                                調(diào)節(jié)離子強(qiáng)度,低鹽(<50 mM NaCl)可增強(qiáng)蛋白吸附。
                                柱子平衡:
                                用 5 倍柱體積(CV)的平衡緩沖液清洗柱子,流速 1-2 mL/min。
                                監(jiān)測 280 nm 吸光度,確保基線穩(wěn)定。

                                Step 2. 蛋白結(jié)合
                                樣品加載:
                                以 1 mL/min 低流速 加載蛋白(最大不超過柱體積的 10%)。
                                監(jiān)測 280 nm,確保蛋白吸附完全(流出液 A280 降低)。
                                洗滌雜質(zhì):
                                繼續(xù)用平衡緩沖液清洗柱子,直到流出液 A280 降至基線(去除未結(jié)合蛋白)。

                                Step 3. 洗脫蛋白
                                梯度洗脫:
                                使用 0-1 M NaCl 線性梯度(通常 10-20 CV)。
                                逐步增加鹽濃度,使不同結(jié)合力的蛋白依次洗脫。
                                監(jiān)測 280 nm,記錄蛋白洗脫峰。
                                等度洗脫(可選):
                                直接用 0.5-1 M NaCl 緩沖液一步洗脫目標(biāo)蛋白(適用于已知洗脫條件的蛋白)。

                                Step 4. 分段收集與后處理
                                收集洗脫組分:
                                根據(jù) UV 吸收峰,分段收集蛋白組分。
                                用 SDS-PAGE 確定目標(biāo)蛋白所在的洗脫組分。
                                緩沖液置換:
                                透析或超濾換至目標(biāo)緩沖液(如 PBS、Tris-HCl)。
                                濃縮蛋白(如使用 10 kDa 超濾離心管)。

                                4. 優(yōu)化策略

                                (1) 提高分辨率
                                降低流速(0.5-1 mL/min),減少峰擴(kuò)散。
                                優(yōu)化梯度洗脫(線性梯度 vs. 分步梯度)。

                                (2) 提高結(jié)合效率
                                選擇合適的 pH,使蛋白帶足夠電荷。
                                低離子強(qiáng)度(<50 mM NaCl)有助于蛋白結(jié)合。

                                (3) 目標(biāo)蛋白洗脫優(yōu)化
                                低 pH 或高 pH 改變蛋白電荷狀態(tài),幫助洗脫。
                                除了 NaCl,也可嘗試 KCl 或 (NH₄)₂SO₄。

                                5. 結(jié)果分析

                                SDS-PAGE:檢測目標(biāo)蛋白的純度。
                                UV 280 nm 吸收峰:確認(rèn)目標(biāo)蛋白的洗脫位置。
                                蛋白濃度測定(Bradford/BCA 法):計(jì)算蛋白回收率。

                                6. 常見問題及解決方案

                                問題 可能原因 解決方案
                                目標(biāo)蛋白未結(jié)合柱子 pH 不合適,蛋白未帶電 調(diào)整 pH 使蛋白帶電
                                目標(biāo)蛋白流失在洗脫前 樣品鹽濃度過高 降低 NaCl 濃度 <50 mM
                                目標(biāo)蛋白洗脫不完全 鹽濃度不夠 提高 NaCl 梯度(0-1 M)
                                目標(biāo)蛋白變性 pH 過低或過高 選擇溫和 pH(pH 6-8)

                                7. 典型實(shí)驗(yàn)參數(shù)
                                參數(shù) 設(shè)定值
                                柱體積 5 mL (HiTrap Q/SP)
                                流速 1 mL/min
                                平衡緩沖液 20 mM Tris-HCl (pH 7.4), 50 mM NaCl
                                洗脫方式 0-1 M NaCl 梯度洗脫 (20 CV)
                                收集方式 1 mL 分段收集
                                儀器 盡量選擇優(yōu)質(zhì)穩(wěn)定的儀器,這樣可以去除設(shè)備因素

                                總結(jié)
                                離子交換層析是一種高效的蛋白純化方法,通過調(diào)節(jié) pH 和鹽梯度,可獲得高純度目標(biāo)蛋白。合理選擇 緩沖體系、填料和梯度洗脫方式,可顯著提高分辨率和回收率。
                                 
                                如果你有特定蛋白或設(shè)備的需求,可進(jìn)一步優(yōu)化實(shí)驗(yàn)條件!
                                來源:輝因科技(北京)有限公司
                                聯(lián)系電話:010-61943965
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