2009年Hans Clevers實驗室對腸道培養(yǎng)體系進行了開創(chuàng)性地研究（Sato et al.,2009 )，2011年Sato等人發(fā)表了第一個描述完整分離腸隱窩以及后續(xù)培養(yǎng)的研究方案（Sato et al.,2011)。為了降低培養(yǎng)成本、簡化培養(yǎng)流程，后續(xù)有多個文獻報道了對此培養(yǎng)方法的改進（Mache et al.,2013;Vandussen et al.,2015;Zietek et al.,2015)，包括降低一些生長因子的濃度，或利用重組細胞系來生產Wnt3a、
Noggin和R-Spondin1的條件培養(yǎng)基等。
 

目前常用的隱窩分離方法有兩種。一種方法是利用EDTA從基底膜上分離隱窩，另一種方法則采用膠原酶消化腸道組織。本文將詳細闡述兩種方法提取小鼠及人源組織中隱窩的步驟及要點。

一、利用EDTA溶液分離腸道隱窩
（一）小鼠隱窩的分離
相較于膠原酶法，該方法操作簡單，可避免成纖維細胞污染，而其成本稍高的缺點則在選擇�；�生物全流程試劑盒時可得到極大的緩解。對于新手難以識別隱窩部分，減少細胞碎片等技術難題也有�；�生物的專業(yè)團隊協(xié)助分析，解惑答疑。

相較于先前培養(yǎng)方法，該實驗進行優(yōu)化后，避免了實驗人員的手與小鼠腸道的直接接觸，減少了細胞污染概率，并縮短了實驗所需時間。該方法隱窩分離效率高的同時可能伴有稍多的細胞碎片（缺乏操作經驗），但小塊組織便可分離出足夠隱窩，且在模基培養(yǎng)基的誘導下類器官初次傳代時便可清除不需要的細胞碎片。

 

小鼠隱窩分離所需材料

耗材

48孔細胞培養(yǎng)板、離心管（50mL)、細胞培養(yǎng)皿（6cm和10cm）、移液器（規(guī)格為10μL、200μL、1000μL和5000μL）、無菌吸頭（規(guī)格為10μL、200μL 、1000μL和5000μL）、無菌鑷子、無菌組織剪、70μm細胞過濾器、手術刀片。

 

試劑

MatrigengeL Matrix（推薦貨號：082703/082755）；小鼠小腸類器官培養(yǎng)試劑盒（推薦貨號：MA-0817H006）；類器官培養(yǎng)防黏附潤洗液；類器官回收液（用于傳代培養(yǎng)）；75%乙醇溶液；DPBS；雙抗（青霉素、鏈霉素）；基礎培養(yǎng)基；EDTA溶液（pH=8.0）。

 

實驗前準備

· MatrigengeL Matrix（4℃化凍）；
· �；�生物預冷盒；
· 配制足量添加1%雙抗的DPBS；
· 配制足量添加0.1%BSA的DPBS；

· 配制5mMol/L EDTA溶液：10mL預冷DPBS溶液中加入

· 100μL0.5M EDTA溶液pH8.0，置于冰上備用。

 

小鼠小腸類器官完全培養(yǎng)基的制備

將200μL Mouse Intestinal Organoid Supplement B(50x)，40μL Mouse Intestinal Organoid Supplement C(250x）加至9.76mL Mouse Intestinal Organoid Basal Medium中，充分混合，配制成10mL小鼠小腸類器官完全培養(yǎng)基。室溫平衡，可在2~8°C儲存，建議在兩周內使用。
   

小鼠小腸隱窩分離流程

（1）按倫理規(guī)定處死小鼠后，表面噴灑酒精殺菌。在無菌條件下取出近胃端3～10cm腸組織，用鑷子盡可能去除腸道外部的腸系膜、脂肪，放入4℃預冷的含雙抗的DPBS溶液中。
 

小鼠小腸剪取

（2）使用手術剪將腸管剪開，蕩洗2遍后，腸腔面朝上，一只手使用手術鑷夾住腸組織一端，另一只手使用手術刀片輕輕刮去腸腔表面腸絨毛，待腸絨毛被刮凈后，將腸組織置于新的含DPBS的培養(yǎng)皿中清洗，重復清洗2次。將清洗后的小腸組織剪碎至2mm寬，轉移至新的培養(yǎng)皿中，用DPBS清洗2遍。
 

小鼠小腸刮絨毛
 

（3）將清洗好的腸段轉移至含5mMol/L EDTA的預冷DPBS中消化，置于4℃孵育20～30min。消化20分鐘可用移液器輕柔吹打腸段，取上清顯微鏡下觀察，待上清出現(xiàn)完整隱窩即可終止消化，若無隱窩可適當延長消化時間，盡量不超過30分鐘。

（4）消化完成后，將組織碎片轉移到新的含DPBS的培養(yǎng)皿中清洗，重復2次以去除EDTA。

（5）用5mL移液管在預冷的0.1%BSA的DPBS的培養(yǎng)皿或50mL離心管中吹打、重懸組織碎片，使組織反復穿過移液管尖以產生機械剪切力從而使隱窩與基底層分離，取一部分懸液鏡檢，當可以看到大量的隱窩樣結構后，停止吹打，并對吹打后的組織懸液進行70μm濾網過濾。
 

濾網過濾后的組織懸液鏡檢圖
 

（6）收集穿過濾網的組織懸液，300g離心力4℃離心3min。

（7）棄上清，使用1mL0.1%BSA的DPBS重懸組織沉淀，取20μl懸液進行鏡檢和隱窩計數(shù)，計數(shù)完成后吸取包含所需隱窩量的懸液，300g離心力4℃離心3min，棄上清后置于冰上。
 

種板培養(yǎng)

（1）用適量的Matrigengel Matrix重懸組織沉淀，推薦重懸密度為每10μL Matrigengel Matrix懸液包含70至100個隱窩，重懸后置于冰上，重懸時間不超30以避免Matrigengel Matrix過早凝固。（Matrigengel Matrix稀釋比例應在70%以上以保證培養(yǎng)過程中Matrigengel Matrix的結構穩(wěn)定性）。

（2）將Matrigengel Matrix和組織細胞的混合懸液點入48孔板底部正中央，每孔15μL左右，避免懸液接觸孔板側壁。（為防止Matrigengel Matrix室溫凝固，此步驟應盡快完成）。
 

基質膠與細胞混合液點板
 

（3）將接種完成后的培養(yǎng)板置于37℃二氧化碳恒溫培養(yǎng)箱中，孵育15min左右待Matrigengel Matrix凝固。

（4）待Matrigengel Matrix完全凝固后，沿壁緩慢加入已配制好的小鼠小腸類器官完全培養(yǎng)基，48孔板每孔250μL，避免破壞已凝固結構。

（5）將培養(yǎng)板置于37℃二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

（6）每3天更換一次培養(yǎng)基，更換培養(yǎng)基時應避免破壞Matrigengel Matrix，密切監(jiān)測類器官生長狀態(tài)。
 

（二）人源腸隱窩分離

該實驗流程適用于人腸壁全層組織，大約需10cm²大小，所需試劑體積及孵育時間需根據(jù)實際組織的大小作出相應調整。

所需材料

耗材

剪刀、鑷子(鈍頭)；培養(yǎng)皿；載玻片；50mL離心管；1.5mL EP管；70μm細胞篩；96孔板(平底)；離心機；搖床；1000/100μL槍頭；顯微鏡；24孔板

試劑與溶液

不含Ca²+/Mg²+的HBSS；0.5M EDTA溶液；青霉素/鏈霉素(雙抗，AA)；�；�基質膠；�；�生物人小腸類器官培養(yǎng)基套裝

實驗前準備

· MatrigengeL Matrix（4℃化凍）；

· �；�生物預冷盒；

· HBSS(4℃預冷過夜)；

· 1000/100μL槍頭(4℃預冷過夜)；

· 離心機預冷(4℃)；冰盒；

· 制備人源隱窩培養(yǎng)基(hCCM)并置于室溫或培養(yǎng)箱內預熱；

· 制備基礎培養(yǎng)基(BCM)(4℃預冷)；

· 將24孔板置于培養(yǎng)箱預熱。

 

每塊腸組織標本需準備以下物品

· 1個培養(yǎng)皿；

· 2個50mL離心管內加入30mL HBSS(加入1%雙抗)，標記樣本編號，置于4℃預冷；

· 5個50mL離心管內加入20mL HBSS置于4℃預冷，標記樣本及組分編號；

· 2個50mL離心管(標記樣本編號)；

· 1~2個70μm細胞篩；

 

人源腸隱窩的分離流程

（1）用預冷的HBSS清洗腸組織樣本。

（2）將組織移至裝有預冷HBSS的培養(yǎng)皿中，用剪刀及鑷子小心去除肌層及黏附的結締組織。

（3）棄去HBSS, 更換預冷的HBSS清洗組織樣本。

（4）棄去HBSS, 將組織的管腔面朝上，置于培養(yǎng)皿內，用載玻片輕輕用力刮去組織的肌層及絨毛。

（5）將組織移至加入30mL預冷HBSS的50mL離心管中，劇烈搖晃離心管約10次，棄去上清。

（6）重復第5步清洗步驟2~3次，直至上清澄清。

（7）將組織移至加入30mL預冷HBSS的50mL離心管中，置于冰上，加入120μL0.5M EDTA溶液(終濃度為2mM)，若同時處理超過一塊組織，則需要同時加入EDTA溶液。

（8）4℃孵育，搖床上輕輕震蕩30~60min(小腸)，或30~120min(大腸)。

（9）將組織移至新的裝有20mL預冷HBSS且標有標本及組分編號的50mL離心管中，劇烈搖晃離心管約5~10次(組分1)，立即將離心管置于冰上。

（10）將組織移至新的裝有20mL預冷HBSS且標有標本及組分編號的50mL離心管中，劇烈搖晃離心管約5~10次(組分2)，再重復3次這個步驟以獲得5個組分。

（11） 根據(jù)小鼠腸隱窩提取流程的第8步進行鏡下觀察。若隱窩數(shù)量較少，則需檢查震蕩步驟的上清；若有大量隱窩，需減少孵育時間；若在此步驟中，沒有隱窩脫落下來，則需將組織加入2mM EDTA的HBSS溶液中再次4℃孵育。逐步增加孵育時間(15~30min)，直到獲得足夠數(shù)量的隱窩。

（12）70μm細胞篩置于標記后的50mL離心管上，將最終選定的組分過細胞篩，離心 (350g、3min、4℃)沉淀隱窩，棄去上清后立即置于冰上。

（13）用10mL預冷的基礎培養(yǎng)液重懸沉淀，取10μL重懸液于顯微鏡下進行隱窩計數(shù)，估算隱窩總個數(shù)(10mL中隱窩總個數(shù)=10μL中隱窩個數(shù)×1000)。按每孔種50~100個隱窩計算所需重懸液體積，移至適當標記的50mL離心管中。

（14）離心(350g、3min、4℃)沉淀隱窩，去除上清，加入適量基質膠(每孔50μL/50~100個隱窩)。使用預冷的槍頭抽吸10次重懸沉淀，小心避免產生氣泡，冰上操作。

（15）用預冷的槍頭每孔取50μL的基質膠重懸液滴加在預熱的24孔板內，注意需滴入孔的正中，可形成半球形液滴；為更好操作，可剪去槍頭的遠端使其開口更寬。

（16）將孔板置于37℃培養(yǎng)箱內，使基質膠固化約5~10min，每孔加入500μL培養(yǎng)基覆蓋基質膠。

二、利用膠原酶分離腸道隱窩

小鼠腸隱窩的分離

相較于EDTA法，該方法成本稍低，無需選擇特定的組分進行培養(yǎng)也可培養(yǎng)出大量體積較大的隱窩，但膠原酶酶法需要嚴格的實驗流程，同時有被成纖維細胞污染的風險。

小鼠腸隱窩分離所需材料

耗材

剪刀、鑷子、刀；篩子；培養(yǎng)皿；50mL離心管；15mL離心管；96孔板(平底)；離心機；水浴鍋；1000/100μL槍頭；10mL塑料移液管；顯微鏡；注射器和0.22μm無菌濾器；尺子；70μm細胞篩；48孔板。

試劑與溶液

70%乙醇；DMEM6546；膠原酶XI；不含Ca²+/Mg²+的PBS；青霉素/鏈霉素(雙抗，AA)；�；�基質膠；�；�生物小鼠小腸類器官培養(yǎng)試劑盒。

每只小鼠/每個腸段需準備以下物品

· 2個培養(yǎng)皿；

· 1~2個50mL離心管內加入20mL PBS(加入1%雙抗),標記小鼠編號，置于4℃ 預冷；

· 1~2個50mL離心管，標記小鼠編號；

· 6個15mL離心管，標記小鼠編號；

· 稱取適量的膠原酶XI于50mL離心管中，-20℃保存

·  1個70μm細胞篩；

 

 小腸隱窩的分離流程

（1）按照小鼠腸隱窩分離流程準備整個小腸樣本。

（2）將小腸樣本移至裝有預冷PBS的培養(yǎng)皿中。將小腸切成腸段以便操作，用剪刀縱向剪開小腸，將小腸組織移至加入PBS的50mL離心管中，劇烈搖晃離心管5min以清洗組織。這個步驟重復多次直至清除小腸組織中的黏液及碎片
 

腸段清洗
 

（3）將組織移至裝有預冷PBS的培養(yǎng)皿中，PBS僅需覆蓋培養(yǎng)皿底部，用鑷子及刀片將組織切成小塊（約1mm²）。

（4）用5~10mL移液器將組織塊和PBS移至15mL離心管中，加入預冷的PBS至10mL, 將離心管翻轉5次，靜置使組織塊沉降。小心棄上清，再次加入10mL預冷的PBS，重復清洗步驟直至上清澄清(大約需4次)。

準備膠原酶XI溶液：將14mg膠原酶XI加入預熱的40mL DMEM 6546，無菌過濾膠原酶溶液至50mL離心管中，置于37℃水浴鍋中。

（5）棄去上清，盡可能不殘留PBS，加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻。

（6）在37℃水浴中孵育4.5min，小心翻轉離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，棄上清。

（7）加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻；在37℃水浴中孵育4.5min，搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，棄上清。

（8）加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻；在37℃水浴中孵育15min，分別在4.5min、9.5min、14.5min后搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，棄上清。

（9）加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻；在37℃水浴中孵育15min，分別在4.5min、9.5min、14.5min后搖晃離心管30s，靜置45秒使組織塊沉降。

（10）取出上清移至新的15mL離心管中，100g、4℃離心2min，棄上清，10mL預冷PBS重懸沉淀。

（11）100g、4℃離心2min，棄上清，10mL預冷PBS重懸沉淀，將重懸液通過70μm細胞篩至適當標記的50mL離心管中。

（12）取10μL重懸液于顯微鏡下進行隱窩計數(shù)，估算隱窩總個數(shù)(10mL 中隱窩總個數(shù)=10μL中隱窩個數(shù)×1000)。按每孔種100~200個隱窩計算所需重懸液體積，移至適當標記的50mL離心管中。

 

（13）按照小鼠腸隱窩提取流程中的第12~14步驟進行后續(xù)實驗。

 

大腸隱窩的分離流程

（1）按照小鼠腸隱窩分離流程準備結腸樣本。

 

（2）按照小腸隱窩分離流程中第2~4步驟進行實驗。

準備膠原酶XI溶液：將14mg膠原酶XI加入預熱的40mL DMEM  6546，無菌過濾膠原酶溶液至50mL離心管中，置于在37℃水浴鍋中。

 

（3）棄上清，盡可能不殘留PBS，加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻。

 

（4）在37℃水浴中孵育9.5min，劇烈搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，棄上清。

 

（5）加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻；在37℃水浴中孵育14.5min，劇烈搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，棄上清。

 

（6）加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻；在37℃水浴中孵育15min，分別在4.5min、9.5min、14.5min后搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，該上清即為組分1，將其移至適當標記的15mL離心管中。

 

（7）加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻；在37℃水浴中孵育15min，分別在4.5min、9.5min、14.5min后搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，該上清即為組分2。

同時，將組分1于100g、4℃離心2min，棄上清；10mL預冷PBS重懸沉淀，再次于100g、4℃離心2min，棄上清；5mL預冷PBS重懸沉淀，置于冰上。

 

（8）將組分2的上清移至15mL離心管中，于100g、4℃離心2min，棄上清；10mL預冷PBS 重懸沉淀，再次于100g、4℃離心2min，棄上清；5mL預冷PBS重懸沉淀。

 

（9）將組分1重懸液與組分2重懸液混合得到10mL隱窩懸液，通過70μm細胞篩至適當標記的50mL離心管中。

 

（10）取10μL重懸液于顯微鏡下進行隱窩計數(shù)，估算隱窩總個數(shù)(10mL中隱窩總個數(shù)=10μL中隱窩個數(shù)×1000)。按每孔種100~200個隱窩計算所需重懸液體積，移至適當標記的50mL離心管中。

 

（11）按照小鼠腸隱窩提取流程中的第12~14步驟進行后續(xù)實驗。

（3）將組織移至裝有預冷PBS的培養(yǎng)皿中，PBS僅需覆蓋培養(yǎng)皿底部，用鑷子及刀片將組織切成小塊（約1mm²）。

 

（4）用5~10mL移液器將組織塊和PBS移至15mL離心管中，加入預冷的PBS至10mL, 將離心管翻轉5次，靜置使組織塊沉降。小心棄上清，再次加入10mL預冷的PBS，重復清洗步驟直至上清澄清(大約需4次)。
 

準備膠原酶XI溶液：將14mg膠原酶XI加入預熱的40mL DMEM 6546，無菌過濾膠原酶溶液至50mL離心管中，置于37℃水浴鍋中。

 

（5）棄去上清，盡可能不殘留PBS，加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻。

 

（6）在37℃水浴中孵育4.5min，小心翻轉離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，棄上清。

 

（7）加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻；在37℃水浴中孵育4.5min，搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，棄上清。

 

（8）加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻；在37℃水浴中孵育15min，分別在4.5min、9.5min、14.5min后搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，棄上清。

 

（9）加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻；在37℃水浴中孵育15min，分別在4.5min、9.5min、14.5min后搖晃離心管30s，靜置45秒使組織塊沉降。

 

（10）取出上清移至新的15mL離心管中，100g、4℃離心2min，棄上清，10mL預冷PBS重懸沉淀。

 

（11）100g、4℃離心2min，棄上清，10mL預冷PBS重懸沉淀，將重懸液通過70μm細胞篩至適當標記的50mL離心管中。

 

（12）取10μL重懸液于顯微鏡下進行隱窩計數(shù)，估算隱窩總個數(shù)(10mL 中隱窩總個數(shù)=10μL中隱窩個數(shù)×1000)。按每孔種100~200個隱窩計算所需重懸液體積，移至適當標記的50mL離心管中。

 

（13）按照小鼠腸隱窩提取流程中的第12~14步驟進行后續(xù)實驗。

 

大腸隱窩的分離流程

（1）按照小鼠腸隱窩分離流程準備結腸樣本。

 

（2）按照小腸隱窩分離流程中第2~4步驟進行實驗。

準備膠原酶XI溶液：將14mg膠原酶XI加入預熱的40mL DMEM  6546，無菌過濾膠原酶溶液至50mL離心管中，置于在37℃水浴鍋中。

 

（3）棄上清，盡可能不殘留PBS，加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻。

 

（4）在37℃水浴中孵育9.5min，劇烈搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，棄上清。

 

（5）加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻；在37℃水浴中孵育14.5min，劇烈搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，棄上清。

 

（6）加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻；在37℃水浴中孵育15min，分別在4.5min、9.5min、14.5min后搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，該上清即為組分1，將其移至適當標記的15mL離心管中。

 

（7）加入10mL預熱的膠原酶XI溶液，混勻；在37℃水浴中孵育15min，分別在4.5min、9.5min、14.5min后搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，該上清即為組分2。

同時，將組分1于100g、4℃離心2min，棄上清；10mL預冷PBS重懸沉淀，再次于100g、4℃離心2min，棄上清；5mL預冷PBS重懸沉淀，置于冰上。

 

（8）將組分2的上清移至15mL離心管中，于100g、4℃離心2min，棄上清；10mL預冷PBS 重懸沉淀，再次于100g、4℃離心2min，棄上清；5mL預冷PBS重懸沉淀。

 

（9）將組分1重懸液與組分2重懸液混合得到10mL隱窩懸液，通過70μm細胞篩至適當標記的50mL離心管中。

 

（10）取10μL重懸液于顯微鏡下進行隱窩計數(shù)，估算隱窩總個數(shù)(10mL中隱窩總個數(shù)=10μL中隱窩個數(shù)×1000)。按每孔種100~200個隱窩計算所需重懸液體積，移至適當標記的50mL離心管中。

 

（11）按照小鼠腸隱窩提取流程中的第12~14步驟進行后續(xù)實驗。
 

人源腸隱窩的分離流程

使用膠原酶分離人源腸隱窩的實驗流程與小鼠腸隱窩的流程非常類似，器械、試劑、溶液及準備工作與小鼠腸隱窩的分離相同。下述的實驗方案適用于約5.5cm²大小的腸組織樣本。

（1）用預冷的PBS清洗腸組織。

 

（2）將組織移至裝有預冷PBS的培養(yǎng)皿中，用剪刀和鑷子小心去除肌層及黏附的結締組織。

 

（3）棄PBS，取新的預冷PBS清洗組織，再重復2次。

 

（4）按照小腸隱窩分離流程中第3~5步驟進行實驗，膠原酶溶液中膠原酶XI的使用劑量如下：

· 小腸組織：15mg/40mL DMEM 6546

· 大腸組織：20mg/40mL DMEM 6546

 

（5）在37℃水浴中孵育9.5min，劇烈搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，該上清即為組分1，將其移至適當標記的15mL離心管中。

 

（6）用10mL預熱的膠原酶XI溶液重懸組分1的沉淀，混勻后在37℃水浴中孵育9.5min,劇烈搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，該上清即為組分2，將其移至適當標記的15mL離心管中。

同時，將組分1于100g、4℃離心2min，棄上清；10mL預冷PBS重懸沉淀，再次于100g、4℃離心2min，棄上清；5mL預冷PBS重懸沉淀，置于冰上。

 

（7）用10mL預熱的膠原酶XI溶液重懸組分2的沉淀，混勻后在37℃水浴中孵育9.5min，劇烈搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，該上清即為組分3，將其移至適當標記的15mL離心管中。

同時，將組分2于100g、4℃離心2min，棄上清；10mL預冷PBS重懸沉淀，再次于100g、4℃離心2min，棄上清；5mL預冷PBS重懸沉淀，置于冰上。

 

（8）用10mL預熱的膠原酶XI溶液重懸組分3的沉淀，混勻后在37℃水浴中孵育9.5min，劇烈搖晃離心管30s，靜置45s使組織塊沉降，該上清即為組分4，將其移至適當標記的15mL離心管中。

同時，將組分3于100g、4℃離心2min，棄上清；10mL預冷PBS重懸沉淀，再次于100g、4℃離心2min，棄上清；5mL預冷PBS重懸沉淀，置于冰上。

 

（9）將組分4的上清于100g、4℃離心2min，棄上清；10mL預冷PBS重懸沉淀，再次于100g、4℃離心2min，棄上清；5mL預冷PBS重懸沉淀。

 

（10）將組分1~4的重懸液混合后，通過70μm細胞篩至適當標記的50mL離心管中，并于350g、4℃離心3min。

 

（11）按照人源腸隱窩提取流程中的第13~16步驟進行后續(xù)實驗。

 

三、腸道類器官培養(yǎng)
 

小鼠和人源類器官培養(yǎng)的主要區(qū)別在于其培養(yǎng)基組分的不同。小鼠小腸類器官培養(yǎng)所需要的補充因子最少，人源類器官培養(yǎng)需要多個生長因子和抑制劑以維持生長，這對于前幾天的培養(yǎng)尤為重要。在培養(yǎng)基中加入Wnt3a可抑制分化，增加干細胞/擴增細胞的比例，促進類器官囊泡樣生長。減少Wnt3a用量、撤掉SB202190或加入可抑制Notch通路的γ-分泌酶抑制劑可誘導類器官向不同的腸上皮細胞譜系分化。

添加與不添加Wnt3a的培養(yǎng)基培養(yǎng)下小鼠小腸類器官生長情況對比圖

 

類器官培養(yǎng)基自己配好還是購買商品化培養(yǎng)好？
 

作為生命科學研究最常用且最重要的方法，細胞體外培養(yǎng)技術直接影響了研究結果的準確性。傳統(tǒng)二維細胞培養(yǎng)模型，藥物無差別作用于每個細胞。細胞間作用力弱，類型單一，細胞貼壁生長，無法模擬體內的生長環(huán)境和空間結構。類器官培養(yǎng)不僅高度模擬體內細胞生長環(huán)境，保持細胞生長結構，擁有器官的部分功能特性，能更好地代表組織器官的生理功能和生物學特性。但現(xiàn)階段許多類器官原代建立尚存在成功率低，培養(yǎng)條件不穩(wěn)定的情況。而使用合適、優(yōu)秀的類器官培養(yǎng)基不僅是類器官培養(yǎng)成功的一大關鍵，還能省時省力節(jié)約科研成本。今天我們來聊聊類器官的培養(yǎng)基。

 

參考資料

[1]https://modernizetesting.org/congress-eliminates-1930s-animal-testing-requirement

[2]https://www.science.org/content/article/fda-no-longer-needs-require-animal-tests-human-drug-trials#.Y76rZYPSO3g.twitter

[3]https://science.sciencemag.org/content/371/6531/839

[4]https://medicalxpress.com/news/2022-02-infusion-3d-cellular-intestine.html

 

�；�類器官培養(yǎng)案例


所需材料

 

耗材

48孔細胞培養(yǎng)板、離心管（50mL)、細胞培養(yǎng)皿（6cm和10cm）、移液器（規(guī)格為10μL、200μL、1000μL和5000μL）、無菌吸頭（規(guī)格為10μL、200μL 、1000μL和5000μL）。

 

試劑與溶液

�；�生物基質膠；類器官培養(yǎng)防黏附潤洗液；類器官回收液（用于傳代培養(yǎng)）。

 

傳代培養(yǎng)

（1）將培養(yǎng)板置于冰上，吸出類器官培養(yǎng)基，不要破壞含有類器官的類器官培養(yǎng)基質膠。

 

（2）在每個孔中加入10倍體積冷的（2~8°C) 類器官回收液。如，取5μl基質膠，加入50μl回收液。

 

（3）在2~8°C或冰上孵育50分鐘，用手輕輕搖動。（孵育10~15分鐘后，您可以用細胞刮板或移液管輕輕取出基質膠圓頂，以加速恢復過程。一旦孔底的基質膠圓頂狀形狀消失，類器官開始漂浮在溶液中，孵育即完成。）

 

（4）輕輕地將孔內的內容物轉移到適當?shù)碾x心管中，單層類器官應格外小心處理，因為細胞很容易脫落。

 

（5）以25~50xg的離心力，在2~8°C下離心，離心管3分鐘，將類器官離散成顆粒，并丟棄上清液。

 

（6）用10倍類器官基礎培養(yǎng)基在室溫下清洗一次類器官，重復上面的第5步。

 

（7）根據(jù)密度加入對應批次的細胞外基質重懸類器官碎片，冰上混勻，取15μL混合懸液點入48孔板中央。

 

（8）將接種完成后的培養(yǎng)板37℃凝固15min左右，沿壁緩慢加入250μL/孔類器官完全培養(yǎng)基。

 

（9）將細胞培養(yǎng)板放入培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng)，每天于倒置顯微鏡下觀察類器官的生長狀態(tài)，每2～3天更換完全培養(yǎng)基。（此時顯微鏡下可觀察到，細胞碎片均已清除。）

 

四、注意事項
 
（1）處理組織時，需做好生物安全防護，使用針頭、手術刀、剪刀和其他鋒利或尖銳工具時，需要額外小心，在保護自己的同時也能減少污染的可能。
 
（2）不要一次處理太多標本，如果允許，始終保持樣本置于冰上。

 

五、操作要點
 
（1）腸道外部的膜、血管和脂肪，盡量去除干凈，否則后續(xù)得到的分餾會有很多雜細胞污染。
 
（2）進行刮隱窩操作時，建議刀片垂直與腸段平行輕輕刮過，刀片不垂直易切斷腸組織，力道不易掌控，力道太大可能會將隱窩一并刮下導致懸液中隱窩含量少。刀片與腸段不平行容易殘留較多的絨毛。
 
（3）小腸隱窩消化液用的5mM/LEDTA，使用前需注意EDTA是否有析出，如析出太多會影響終濃度，有必要更換新的EDTA。
 
（4）若組織分離后無法立刻進行實驗，需將組織存放于活組織細胞保存液，以免失去活性，影響分離效果和培養(yǎng)效果。