Western blot是生物化學和免疫遺傳學中常用的一種蛋白分析方法，其技術(shù)環(huán)節(jié)多，操作時間長，哪一步出現(xiàn)問題，都會影響最后的結(jié)果，今天小編總結(jié)了WB中印跡膜和凝膠中出現(xiàn)的問題及解決方案，希望可以幫助在WB中苦惱的小伙伴。 問題：波浪式的環(huán)繞條帶
引起原因：轉(zhuǎn)印不均勻
解決方法：當組裝三明治結(jié)構(gòu)時，要確保轉(zhuǎn)印堆疊各部分緊密地連接在一起�？赡苄枰�更換海綿墊，以達到適合的松緊度。
  問題:條帶是波浪型的，微笑的，歪斜的
引起原因：
1.在樣本中可能有細胞碎片或者DNA
2.上樣buffer不新鮮或者含有太多鹽成分。
3.運行凝膠太快，導致凝膠升溫，降解聚合物。
解決方法：
1.增加超聲步驟
2.延長加熱時間
3.離心
4.嘗試準備新鮮的緩沖液，使用不同類型的緩沖液，或通過稀釋、透析/微透析或色譜法降低樣品緩沖液的鹽濃度。
6.選擇適當?shù)木彌_液
 7.設置適當?shù)碾娏鞑⒈３值碗妷?br />
 
問題：泳道內(nèi)有多個蛋白條帶
引起原因：
1.封閉不完全
2.一抗特異性低
3.一抗?jié)舛冗^高
解決方法：
1.更換封閉液。許多常用的封閉液可能屏蔽目標上的表位，使其難以檢測。封閉不完全，非特異性結(jié)合到不相關(guān)的裂解蛋白。用商業(yè)的封閉劑代替牛奶可以減少非特異性結(jié)合，同時增強抗體與抗原的相互作用。
2.純化一抗或者更換抗體
3.增加一抗的稀釋比例或者孵育時間，4度孵育可以減少非特異性結(jié)合 問題：剝離的印跡膜仍有條帶
引起原因：剝離不完全
解決方法：
1.優(yōu)化剝離條件，增加剝離時間，需要確保印跡膜完全淹沒在剝離緩沖液中，并在搖床上充分搖動。
2.另一個需要考慮的解決方案是使用熒光標記的二抗進行多重Western blot。使用熒光檢測，您可以檢測多達四種不同的信號，這取決于您的檢測系統(tǒng)。
  問題：氣泡
引起原因：
1.膜和凝膠之間有氣泡。
2.一抗與印跡接觸不足。
解決方法：
1.當進行三明治組裝時，要注意完全清除印跡膜和凝膠之間的空氣。使用玻璃棒或塑料吸管輕輕地把夾在印跡膜薄膜和凝膠之間的空氣擠出來。
2.增加一抗孵育液的體積，并在孵育步驟中驗證溶液是否完全覆蓋膜。孵育盤應該足夠大，使印跡膜可以移動.

 
問題：高背景
引起原因：
1.封閉不充分
2.漂洗不充分
2. 一抗?jié)舛冗^高
解決方法：
1.更換封閉液。許多常用的封閉液可能屏蔽目標上的表位，使其難以檢測。封閉不完全，非特異性結(jié)合到不相關(guān)的裂解蛋白。用商業(yè)的封閉劑代替牛奶可以減少非特異性結(jié)合，同時增強抗體與抗原的相互作用。
2.增加漂洗次數(shù)或洗滌時間。此外，增加漂洗劑的用量或使用更強的漂洗劑，如SDS或NP-40，可以進一步降低背景。
3.增加一抗的稀釋或增加孵育時間，如果必要，4°C孵育可減少非特異性抗體的結(jié)合。

 
問題：熒光western blot的高背景
引起原因：
1.NC膜和某些類型的PVDF膜有自發(fā)熒光，導致高背景信號。
2. 濕膜成像
3. 一抗?jié)舛冗^高導致高背景
4. 漂洗不充分
解決方法：
1.使用低熒光背景膜
2.成像前用甲醇將膜干燥。當印跡膜干時，膜上的自發(fā)熒光減少，熒光基團發(fā)出的特異性信號變亮
3.增加一抗的稀釋或增加孵育時間，如果必要，4°C孵育可減少非特異性抗體的結(jié)合
4.增加漂洗次數(shù)或洗滌時間。此外，增加漂洗劑的用量或使用更強的漂洗劑，如SDS或NP-40，可以進一步降低背景。 問題：Marker太亮
引起原因：Marker上樣量太多
解決方法：
1.增加Marker的稀釋。大多數(shù)Marker在IR 700通道內(nèi)有自發(fā)熒光，這便于在熒光western blot中測定條帶的分子量。然而，如果你已經(jīng)習慣了使用化學發(fā)光Western blot，那么你的Marker可能上樣量過多——我們建議在熒光Western blot上使用大約十分之一的分子量marker。
2.我們建議用非熒光的、干凈的、不透明的材料覆蓋強條帶。