注    意：正式測定之前選擇2-3個預期差異大的樣本做預測定。
測定意義：
GSH/GSSG是細胞內(nèi)最重要的氧化還原對之一。因此，測定細胞內(nèi)GSH和GSSG含量以及GSH/GSSG比值，能夠很好地反映細胞所處的氧化還原狀態(tài)，也是谷胱甘肽氧化還原循環(huán)的主要指標之一。

測定原理：
利用2-VP法測GSSG含量。

自備儀器和用品：
可見分光光度計、低溫離心機、水浴鍋、可調(diào)節(jié)移液器、1mL玻璃比色皿和蒸餾水。

試劑組成和配置：
試劑一：液體50mL×1瓶，4℃保存。
試劑二：液體300μL×1支，4℃保存。
試劑三：液體50mL×1瓶，4℃保存。
試劑四：液體6mL×1瓶，4℃保存。
試劑五： 液體30μL×1瓶，-20℃保存。臨用前加入0.6 mL試劑三稀釋，4℃保存。
試劑六：粉劑×1瓶，4℃保存。臨用前加入40 mL試劑三溶解，現(xiàn)配現(xiàn)用。

粗酶液提取：
1. 組織：按照組織質(zhì)量（g）：試劑一體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL試劑一）進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min，取上清液（如上清不清澈，再離心3min）待測。
2. 細菌、真菌：按照細胞數(shù)量（10⁴個）：試劑一體積（mL）為500~1000：1的比例（建議500萬細胞加入1mL試劑一），冰浴超聲波破碎細胞（功率300w，超聲3秒，間隔7秒，總時間3min）；8000g 4℃離心10min，取上清液（如上清不清澈，再離心3min）的蒸餾水混勻待測。
3. 血清等液體：直接測定。

測定操作:
1. 分光光度計預熱30 min，調(diào)節(jié)波長到412 nm，蒸餾水調(diào)零。
2. 試劑三置于25℃（一般物種）或者37℃（哺乳動物）水浴中保溫30min。
3. 測定管：取1 mL EP管，加入100 μ L上清液，5μ L試劑二，蓋緊后混勻，置于37℃水浴30min；依次加入100 μ L試劑四，10 μ L試劑五，700 μ L試劑六，迅速混勻后，立即測定30 s和150 s光吸收A1和A2，計算ΔA=A2-A1。

GSSG含量計算公式:
1、標準條件下測定的回歸方程為y=0.0276x-0.0011；x為標準品濃度（nmol/mL），y為吸光值(ΔA)。
2、 按蛋白濃度計算
GSSG（nmol/mg prot）=(ΔA+0.0011)÷0.0276×V樣÷(V樣×Cpr)=36.23×(ΔA+0.0011)÷Cpr
3、按樣本鮮重計算
GSSG（nmol /g 鮮重）=(ΔA+0.0011)÷0.0276×V樣÷(V樣÷V樣總×W)=36.23×(ΔA+0.0011)÷W
4、按細胞數(shù)量計算
GSSG（nmol/10⁴ cell）=(ΔA+0.0011)÷0.0276×V樣÷(V樣÷V樣總×細胞數(shù)量)
=36.23×(ΔA+0.0011)÷細胞數(shù)量
5、按照液體體積計算
GSSG（nmol/mL）=(ΔA+0.0011)÷0.0276×V樣÷V樣=36.23×(ΔA+0.0011)
V樣：反應中加入樣本體積，0.1mL；V樣總：加入提取液體積， 1mL；W：樣品質(zhì)量，g，Cpr：樣本蛋白濃度（mg/mL）
 
注意事項：

• 提取過程中去掉蛋白質(zhì)，所以提取液不能用于測定蛋白含量。
• 臨用前配制的試劑配好后4℃保存，2天內(nèi)使用完畢。
• 最低檢出限為0.1μmol/L。
• 反應溫度.嚴格來說，為保證重復性，應在25℃下進行反應。
• 反應時間需精確控制，否則會影響反應速率計算，產(chǎn)生較大誤差。
• 樣品中的GSSG濃度盡可能低一些，否則反應速率太大，沒法控制，所以稀釋倍數(shù)要盡量大些。