實驗小技巧-小鼠心臟線粒體提取

1、準備工作

打開離心機，將離心機運轉(zhuǎn)至低溫4℃并保持溫度。確保所有試劑緩沖液、實驗解剖工具、組織勻漿工具以及離心機轉(zhuǎn)子等均維持在4℃（或者在足夠的冰上操作）

 

1.1小鼠處死辦法

用頸脫位法處死實驗用的小鼠

1.2線粒體提取流程

a) 實驗解剖，取出小鼠心臟部位，去除多余的血管結(jié)構(gòu)、結(jié)締組織以及脂肪組織等，將處理好的心臟器官立刻放入BIOPS緩沖液中，整個過程在4℃環(huán)境（或冰上）進行

b) 在4℃條件下，將心臟器官放入有蓋培養(yǎng)皿中，根據(jù)實驗需要，單獨提取左心室或者使用整個心臟；操作者需小心去除血液凝塊等組織。將處理好的心臟放入10ml的玻璃燒杯中，加入1ml 4℃ BIOPS緩沖液（見2.1），取低溫剪刀，將實驗心臟組織剪碎至小塊

c) 將組織碎塊放入10ml手動玻璃研磨器中，加入2ml線粒體緩沖液B（見2.3），勻速手動研磨6-8次，形成心臟組織勻漿液

d) 將心臟組織勻漿液放入50ml離心管中，再加入3ml線粒體緩沖液B

e) 將上述液體在4℃、800g的條件下離心10min

f) 取出上清液，重新放置于新的50ml離心管中

g) 將該上清液再次在4℃、10000g條件下離心10min

h) 移除上清液，保留線粒體沉淀

i) 用500微升線粒體緩沖液A（見2.2）再次懸浮線粒體沉淀，然后，用線粒體緩沖液A將液體定容至2ml，形成線粒體懸浮液

j) 將線粒體懸浮液在4℃、10000g的條件下離心10min，保留沉淀

k) 用懸浮緩沖液（見2.4）再次懸浮線粒體沉淀，定容至200微升

l) 取5微升線粒體懸浮液直接加入O2k能量代謝測量儀的倉室中，用于線粒體呼吸能力的測量

m) 將剩余的線粒體懸浮液進行分裝，每20微升放入一個離心管，零下20℃保存，用于后續(xù)的分析（蛋白濃度定量等）

 

2、試劑

2.1BIOPS器官組織緩沖液

常見于組織器官等實驗材料的緩沖液，詳細內(nèi)容可咨詢工作人員

2.2線粒體緩沖液A

2.3 線粒體緩沖液B

在10ml線粒體緩沖液A中加入5mg subtilisin

2.4 懸浮緩沖液

不帶有BSA的線粒體緩沖液A

 

3、參考文獻

1.Mela L , Seitz S (1979)Isolation of mitochondria with emphasis on heart mitochondria from small amounts of tissue.Methods Enzymol 55:39-46

2.Fontana-Ayoub M, Fasching M, Gnaiger E (2016) Selected media and chemicals for respirometry with mitochondrial preparations. Mitochondr Physiol Network 03.02(18):1-10.



O2k細胞能量代謝分析系統(tǒng)的實驗操作

01 儀器校準

       開機預熱10min后，將2 ml（或0.5ml）呼吸介質(zhì)放入倉室中，使用空氣進行單點校準

02 樣本加入

       用移液槍量取線粒體懸濁液體積，若體積為20微升，則先從倉室中移除20微升呼吸介質(zhì)，再將20微升的線粒體懸濁液注入倉室中，確保倉室內(nèi)的總體積不變，將上蓋封閉，開始測量

03 藥物加入

       根據(jù)實驗需求按順序加入相應(yīng)藥物，待一種藥物加入后，軟件曲線進入平臺期，則可加入下一種藥物，直至所有藥物加入完全，并每種藥物均出現(xiàn)平臺期為最佳。注，其中FCCP等解偶聯(lián)劑，需多次添加，直至找到最大呼吸量為止，其他藥物可根據(jù)常規(guī)濃度添加，若無法出現(xiàn)平臺期，則可重復滴加，直至找到平臺期

04 數(shù)據(jù)整理

       所有藥物平臺期可在軟件上直接選擇有效曲線波段（排除異常波動），軟件可直接計算耗氧率等數(shù)據(jù)

05 熒光參數(shù)

       熒光參數(shù)需做介質(zhì)校準和藥物校準，軟件提供完整的Protocol，按軟件流程要求操作即可，其校準主要與介質(zhì)的種類更換，藥物的批次等有直接關(guān)系，若使用相同介質(zhì)，同批次藥物，則所有實驗進行一次校準即可

06 熒光參數(shù)實驗流程

       熒光測量流程與耗氧測量流程重復，兩個實驗為同時進行、同時測量，無需單獨操作，結(jié)果與耗氧結(jié)果同時用軟件分析