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                                雙向電泳完整操作步驟

                                瀏覽次數(shù):2533 發(fā)布日期:2008-5-8  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
                                (一)第一向等電聚焦
                                1. 從冰箱中取-20℃冷凍保存的水化上樣緩沖液(I)(不含DTT,不含Bio-Lyte)一小管(1ml/管),置室溫溶解。

                                2. 在小管中加入0.01g DTT, Bio-Lyte 4-6、5-7各2.5ml,充分混勻。

                                3. 從小管中取出400ml水化上樣緩沖液,加入100ml樣品,充分混勻。

                                4. 從冰箱中取-20℃冷凍保存的IPG預(yù)制膠條(17cm pH 4-7),室溫中放置10分鐘。

                                5. 沿著聚焦盤或水化盤中槽的邊緣至左而右線性加入樣品。在槽兩端各1cm左右不要加樣,中間的樣品液一定要連貫。注意:不要產(chǎn)生氣泡。否則影響到膠條中蛋白質(zhì)的分布。

                                6. 當(dāng)所有的蛋白質(zhì)樣品都已經(jīng)加入到聚焦盤或水化盤中后,用鑷子輕輕的去除預(yù)制IPG膠條上的保護(hù)層。

                                7. 分清膠條的正負(fù)極,輕輕地將IPG膠條膠面朝下置于聚焦盤或水化盤中樣品溶液上,使得膠條的正極(標(biāo)有+)對應(yīng)于聚焦盤的正極。確保膠條與電極緊密接觸。不要使樣品溶液弄到膠條背面的塑料支撐膜上,因為這些溶液不會被膠條吸收。同樣還要注意不使膠條下面的溶液產(chǎn)生氣泡。如果已經(jīng)產(chǎn)生氣泡,用鑷子輕輕地提起膠條的一端,上下移動膠條,直到氣泡被趕到膠條以外。

                                8. 在每根膠條上覆蓋2-3ml礦物油,防止膠條水化過程中液體的蒸發(fā)。需緩慢的加入礦物油,沿著膠條,使礦物油一滴一滴慢慢加在塑料支撐膜上。

                                9. 對好正、負(fù)極,蓋上蓋子。設(shè)置等電聚焦程序。

                                10.聚焦結(jié)束的膠條。立即進(jìn)行平衡、第二向SDS-PAGE電泳,否則將膠條置于樣品水化盤中,-20℃冰箱保存。

                                (二)第二向SDS-PAGE電泳

                                1. 配制10%的丙烯酰胺凝膠兩塊。配80ml凝膠溶液,每塊凝膠40ml,將溶液分別注入玻璃板夾層中,上部留1cm的空間,用MilliQ水、乙醇或水飽和正丁醇封面,保持膠面平整。聚合30分鐘。一般凝膠與上方液體分層后,表明凝膠已基本聚合。

                                2. 待凝膠凝固后,倒去分離膠表面的MilliQ水、乙醇或水飽和正丁醇,用MilliQ水沖洗。

                                3. 從-20℃冰箱中取出的膠條,先于室溫放置10分鐘,使其溶解。

                                4. 配制膠條平衡緩沖液I。

                                5.在桌上先放置干的厚濾紙,聚焦好的膠條膠面朝上放在干的厚濾紙上。將另一份厚濾紙用MilliQ水浸濕,擠去多余水分,然后直接置于膠條上,輕輕吸干膠條上的礦物油及多余樣品。這可以減少凝膠染色時出現(xiàn)的縱條紋。

                                6. 將膠條轉(zhuǎn)移至溶漲盤中,每個槽一根膠條,在有膠條的槽中加入5ml膠條平衡緩沖液I。將樣品水化盤放在水平搖床上緩慢搖晃15分鐘。

                                7. 配制膠條平衡緩沖液II。

                                8. 第一次平衡結(jié)束后,徹底倒掉或吸掉樣品水化盤中的膠條平衡緩沖液I。并用濾紙吸取多余的平衡液(將膠條豎在濾紙上,以免損失蛋白或損壞凝膠表面)。再加入膠條平衡緩沖液II,繼續(xù)在水平搖床上緩慢搖晃15分鐘。

                                9. 用濾紙吸去SDS-PAGE聚丙烯酰胺凝膠上方玻璃板間多余的液體。將處理好的第二向凝膠放在桌面上,長玻璃板在下,短玻璃板朝上,凝膠的頂部對著自己。

                                10.將瓊脂糖封膠液進(jìn)行加熱溶解。

                                11.將10×電泳緩沖液,用量筒稀釋10倍,成1×電泳緩沖液。趕去緩沖液表面的氣泡。

                                12.第二次平衡結(jié)束后,徹底倒掉或吸掉樣品水化盤中的膠條平衡緩沖液II。并用濾紙吸取多余的平衡液(將膠條豎在濾紙上,以免損失蛋白或損壞凝膠表面)。

                                13.將IPG膠條從樣品水化盤中移出,用鑷子夾住膠條的一端使膠面完全浸末在1×電泳緩沖液中。然后將膠條膠面朝上放在凝膠的長玻璃板上。其余膠條同樣操作。

                                14.將放有膠條的SDS-PAGE凝膠轉(zhuǎn)移到灌膠架上,短玻璃板一面對著自己。在凝膠的上方加入低熔點瓊脂糖封膠液。

                                15.用鑷子、壓舌板或是平頭的針頭,輕輕地將膠條向下推,使之與聚丙烯酰胺凝膠膠面完全接觸。注意不要在膠條下方產(chǎn)生任何氣泡。在用鑷子、壓舌板或平頭針頭推膠條時,要注意是推動凝膠背面的支撐膜,不要碰到膠面。

                                16.放置5分鐘,使低熔點瓊脂糖封膠液徹底凝固。

                                17.在低熔點瓊脂糖封膠液完全凝固后。將凝膠轉(zhuǎn)移至電泳槽中。

                                18.在電泳槽加入電泳緩沖液后,接通電源,起始時用的低電流(5mA/gel/17cm)或低電壓,待樣品在完全走出IPG膠條,濃縮成一條線后,再加大電流(或電壓)(20-30mA/gel/17cm),待溴酚藍(lán)指示劑達(dá)到底部邊緣時即可停止電泳。

                                19.電泳結(jié)束后,輕輕撬開兩層玻璃,取出凝膠,并切角以作記號(戴手套,防止污染膠面)。

                                20.進(jìn)行染色。

                                標(biāo)簽: 雙向電泳 操作步驟
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